Geïmmobiliseerde CALB
CALB wordt geïmmobiliseerd door fysieke adsorptie op de sterk hydrofobe hars, een macroporeus styreen/methacrylaatpolymeer. Geïmmobiliseerde CALB is geschikt voor toepassingen in organische oplosmiddelen en oplosmiddelvrije systemen, en kan onder geschikte omstandigheden herhaaldelijk worden gerecycled en hergebruikt.
Productcode: SZ-CALB-IMMO100A, SZ-CALB-IMMO100B.
★Hogere activiteit, hogere chirale selectiviteit en hogere stabiliteit.
★Betere prestaties in de niet-waterige fasen.
★Eenvoudig te verwijderen uit het reactiesysteem, snelle beëindiging van reacties en het voorkomen van eiwitresten in het product.
★Kan worden gerecycled en hergebruikt om de kosten te verlagen.
| Activiteit | ≥10000PLU/g |
| pH-bereik voor de reactie | 5-9 |
| Temperatuurbereik voor de reactie | 10-60℃ |
| Verschijning | CALB-IMMO100-A: Lichtgeel tot bruin vast CALB-IMMO100-B: Wit tot lichtbruin effen |
| Deeltjesgrootte | 300-500 μm |
| Vochtverlies bij drogen bij 105℃ | 0,5%-3,0% |
| Hars voor immobilisatie | Macroporeus styreen/methacrylaatpolymeer |
| reactieoplosmiddel | Water, organisch oplosmiddel, enz., of zonder oplosmiddel. Voor reacties in sommige organische oplosmiddelen kan 3% water worden toegevoegd om het reactie-effect te verbeteren. |
| Deeltjesgrootte | CALB-IMMO100-A: 200-800 μm CALB-IMMO100-B: 400-1200 μm |
Eenheidsdefinitie: 1 eenheid komt overeen met de synthese van 1 μmol propyllauraat per minuut uit laurinezuur en 1-propanol bij 60℃. De bovenstaande CALB-IMMP100-A en CALB-IMMO100-B corresponderen met geïmmobiliseerde dragers met verschillende deeltjesgroottes.
1. Reactortype
Het geïmmobiliseerde enzym is geschikt voor zowel ketelbatchreactoren als continustroomreactoren met vast bed. Het is belangrijk om te voorkomen dat het enzym door externe krachten wordt geplet tijdens het toevoeren of vullen.
2. Reactie-pH, temperatuur en oplosmiddel
Het geïmmobiliseerde enzym moet als laatste worden toegevoegd, nadat de andere materialen zijn toegevoegd en opgelost, en de pH is aangepast.
Als de consumptie van substraat of de vorming van product tijdens de reactie tot een pH-verandering leidt, moet er voldoende buffer aan het reactiesysteem worden toegevoegd, of moet de pH tijdens de reactie worden gecontroleerd en aangepast.
Binnen het temperatuurtolerantiebereik van CALB (onder 60 ℃) nam de omzettingssnelheid toe met de temperatuur. In de praktijk moet de reactietemperatuur worden gekozen op basis van de stabiliteit van het substraat of product.
Over het algemeen verloopt de esterhydrolysereactie het best in een waterig oplosmiddel, terwijl de estersynthesereactie het best verloopt in een organisch oplosmiddel. Het organische oplosmiddel kan ethanol, tetrahydrofuran, n-hexaan, n-heptaan of tolueen zijn, of een geschikt mengsel daarvan. Voor reacties in sommige organische oplosmiddelen kan 3% water worden toegevoegd om het reactie-effect te verbeteren.
3. Hergebruik en levensduur van CALB
Onder de juiste reactieomstandigheden kan CALB worden teruggewonnen en hergebruikt, en de specifieke toepassingstijden variëren per project.
Als de teruggewonnen CALB niet continu opnieuw wordt gebruikt en na terugwinning moet worden opgeslagen, moet deze worden gewassen, gedroogd en luchtdicht worden verpakt bij 2-8 ℃.
Als de reactie-efficiëntie na enkele keren hergebruik iets afneemt, kan CALB naar behoefte worden toegevoegd en kan het gebruik worden voortgezet. Als de reactie-efficiëntie ernstig afneemt, moet het worden vervangen.
Voorbeeld 1 (Aminolyse)(1):
Voorbeeld 2 (Aminolyse)(2):
Voorbeeld 3 (Ringopeningspolyestersynthese)(3):
Voorbeeld 4 (Transesterificatie, regioselectief voor de hydroxylgroep)(4):
Voorbeeld 5 (Transesterificatie, kinetische resolutie van racemische alcoholen)(5):
Voorbeeld 6 (Verestering, kinetische resolutie van carbonzuur)(6):
Voorbeeld 7 (Esterolyse, kinetische resolutie)(7):
Voorbeeld 8 (Hydrolyse van amiden)(8):
Voorbeeld 9 (Acylering van aminen)(9):
Voorbeeld 10 (Aza-Michael-additiereactie)(10):
1. Chen S, Liu F, Zhang K, et al. Tetrahedron Lett, 2016, 57: 5312-5314.
2. Olah M, Boros Z, anszky GH, e tal. Tetraëder, 2016, 72: 7249-7255.
3. Nakaoki1 T, Mei Y, Miller LM, et al. Ind. Biotechnol, 2005, 1(2):126-134.
4. Pawar SV, Yadav G DJ Ind. Eng. Chem, 2015, 31: 335-342.
5. Kamble MP, Shinde SD, Yadav G DJ Mol. Catal. B: Enzym, 2016, 132: 61-66.
6. Shinde SD, Yadav G D. Process Biochem, 2015, 50: 230-236.
7. Souza TC, Fonseca TS, Costa JA, e tal. J. Mol. Catal. B: Enzym, 2016, 130: 58-69.
8. Gavil´an AT, Castillo E, L´opez-Mungu´AJ Mol. Catal. B: Enzym, 2006, 41: 136-140.
9. Joubioux FL, Henda YB, Bridiau N, e tal. J. Mol. Catal. B: Enzym, 2013, 85-86: 193-199.
10. Dhake KP, Tambade PJ, Singhal RS, e tal. Tetraëder Lett, 2010, 51: 4455-4458.
